ispltaИзвестия Санкт-Петербургской лесотехнической академииIzvestia Sankt-Peterburgskoj lesotehniceskoj akademii2079-43042658-5871СПбГЛТУ10.21266/2079-4304.2025.254.185-211isplta-554Research ArticleНАСЕКОМЫЕ-ВРЕДИТЕЛИ ДРЕВЕСНЫХ РАСТЕНИЙ И МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ ЧИСЛЕННОСТИINSECT PESTS OF WOODY PLANTS AND METHODS OF CONTROLОсобенности воздействия комплекса сапроксильных насекомых в процессе микогенного ксилолиза валежной древесины и поленниц из ели и сосныFeatures of the effect of the saproxylic insect complex in the process of mycogenic xylolysis of dead wood and woodpiles from spruce and pinehttps://orcid.org/0000-0002-4050-3564НекляевС. Э.NekliaevS. E.

Святослав Эдуардович Некляев, заведующий лабораторией, кандидат сельскохозяйственных наук, заведующий лабораторией

Центр приоритетных биотехнологий в защите леса; отдел защиты леса; лаборатория лесной фитопатологии и защиты древесины; отдел патологии декоративных и садовых культур; лаборатория диагностики вредных организмов

143050; ул. Институт, владение 5; Московская область; Одинцовскийрайон; Большие Вяземы; 141202; ул. Институтская, д. 15; Московская область; Пушкино

AuthorID: 394048

Svyatoslav E. Nekliaev, PhD (Agriculture), Head of the Laboratory

Department of Pathology of Ornamental and Garden Crops; Laboratory of the Diagnosis of Harmful Organisms; Center for Priority Biotechnologies in Forest Protection; Forest Protection Department; Laboratory of Forest Phytopathology and Wood Protection

143050; Institute str. 5; Moscow region; Odintsovo district; Bolshye Vyazemy; 141202; Institutskaya str. 15; Moscow region; Pushkino

AuthorID: 394048

slava9167748107@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0002-3248-1991ЛаринаГ. Е.LarinaG. E.

Галина Евгеньевна Ларина, заведующий лабораторией, доктор биологических наук, профессор

лаборатория экспериментальных методов исследований

143050; ул. Институт, владение 5; Московская область; Одинцовский район; Большие Вяземы

AuthorID: 157983. WoS ResearcherID: A-9131-2017. Scopus AuthorID: 8697257900

Galina E. Larina, DSc (Biological), Professor, Head of the Laboratory

Laboratory of Experimental Research Methods

143050; Institute str. 5; Moscow region; Odintsovo district; Bolshye Vyazemy

AuthorID: 157983. WoS ResearcherID: A-9131-2017. Scopus AuthorID: 8697257900

larina.galina2014@gmail.comВсероссийский научно-исследовательский институт фитопатологии; Всероссийский научно-исследовательский институт лесоводства и механизации лесного хозяйстваРоссияAll-Russian Scientific Research Institute of Phytopathology; All-Russian Research Institute for Silviculture and Mechanization of ForestryRussian FederationВсероссийский научно-исследовательский институт фитопатологииРоссияAll-Russian Scientific Research Institute of PhytopathologyRussian Federation2025190920251254185211Copyright © Некляев С.Э., Ларина Г.Е., 20252025Некляев С.Э., Ларина Г.Е.Nekliaev S.E., Larina G.E.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://izvestiya-lta.spbftu.ru/jour/article/view/554

   Процесс ксилолиза древесины особенно важен на местах санитарно-оздоровительных мероприятий. Мы считаем, что утилизация природоподобными приемами порубочных остатков, валежника, поленниц в значительной степени связана с деятельностью ассоциативных организмов – ксилотрофных макромицетов и беспозвоночных. Исследования были проведены в 2015–2024 гг. в местах уборки неликвидной древесины на 1270 модельных поленницах и 332 модельных деревьях ели европейской и сосны обыкновенной. Также было совокупно исследовано 5166 образцов древесины и 4479 особей сапроксилов. Функциональное воздействие ряда семейств сапроксильных насекомых заключается в ускорении механического разрушения древесины. В ходе исследований установлено, что на ранних стадиях доминируют представители подсемейства Scolytinae, семейства Buprestidae и рода Pissodes, затем к ним присоединяются насекомые из семейств Siricidae и Cerambycidae. Вторично увлажненную древесину осваивают представители семейств Anobiidae и Cerambycidae триб Hylotrupini и Callidiini. В результате удалось определить индикаторные виды сапроксильных насекомых по сохранности личиночных ходов по стадиям ксилолиза. Сохранность личиночных ходов на IV–VI стадиях зависит от интенсивности развития гнили и положения ствола и идентифицируется по сохранившимся фрагментам и летным отверстиям. Данные математического анализа показали существенную прямую связь между перфорацией стволов личиночными ходами сапроксильными насекомыми родов Anthaxia, Phaenops, Acanthocinus, Callidium, Rhagium, Tetropium, Trypodendron и ростом мицелия ксилотрофных макромицетов родов Fomitopsis, Rhodofomes, Trichaptum, Gloeophyllum (r = 0,7–0,96, P ≤ 0,05), а также между Trypodendron, Anobium, Chalcophora, Tetropium, Arhopalus, Hylotrupes, Monochamus, Spondylis, Sirex, Urocerus и Coniophora, Neoantrodia, Pycnoporellus, Skeletocutis, Antrodia, Fuscopostia, Incrustoporia, Rigidoporus (r = 0,7–0,99, P ≤ 0,05). Наши многолетние данные подтверждают взаимодействие по типу зоохории между насекомыми и грибами в процессе разрушения древесины хвойных пород на месте их гибели. В изменившихся условиях на поленницах не выявлено поселение сапроксильных насекомых. Полученные результаты имеют важное практическое значение для природоподобного контролируемого и направленного развития процессов гумификации древесины на местах проведения санитарно-оздоровительных мероприятий с сохранением биоразнообразия в детритных (цепях разложения) пищевых цепях и повышением устойчивости природных экосистем.

   The process of wood xylolysis is especially important at the sites of sanitary and health measures. We believe that the utilization of felling residues, dead wood, and woodpiles by nature-like methods is largely related to the activity of associative organisms – xylotrophic macromycetes and invertebrates. The studies were conducted in 2015–2024 in illiquid wood harvesting sites on 1,270 model woodpiles and 332 model trees of European spruce and Scots pine. Total of 5,166 wood samples and 4,479 saproxylus individuals were studied. The functional effect of a number of families of saproxylic insects is to accelerate the mechanical destruction of wood. In the course of research, it was found that in the early stages representatives of the subfamily Scolytinae, the family Buprestidae and the genus Pissodes dominate, then insects from the families Siricidae and Cerambycidae join them. The re-moistened wood is used by representatives of the Anobiidae and Cerambycidae families of the Hylotrupini and Callidiini tribes. As a result, it was possible to identify the indicator species of saproxylic insects by the preservation of larval galleries by stages of xylolysis. The preservation of larval galleries in stages IV-VI depends on the intensity of rot development and the position of the trunk and is identified by preserved fragments and flight holes. Mathematical analysis data showed a significant direct relationship between trunk perforation by larval galleries of saproxylic insects of the genus Anthaxia, Phaenops, Acanthocinus, Callidium, Rhagium, Tetropium, Trypodendron and mycelium growth of xylotrophic macromycetes of the genus Fomitopsis, Rhodofomes, Trichaptum, Gloeophyllum (r = 0.7–0.96, P ≤ 0.05), as well as between Trypodendron, Anobium, Chalcophora, Tetropium, Arhopalus, Hylotrupes, Monochamus, Spondylis, Sirex, Urocerus and Coniophora, Neoantrodia, Pycnoporellus, Skeletocutis, Antrodia, Fuscopostia, Incrustoporia, Rigidoporus (r = 0.7–0.99, P ≤ 0.05). Our long-term data confirm the interaction of the type of zoochory between insects and fungi in the process of destruction of coniferous wood at the site of their death. Under the changed conditions, no saproxylic insect settlement was detected on the woodpiles. The results obtained are of great practical importance for the nature-like controlled and directed development of wood humification processes at sites of sanitary and health measures, while preserving biodiversity in detritus (decomposition chains) food chains and increasing the stability of natural ecosystems.

ксилолизсапроксильные насекомыедревесинаксилотрофные базидиомицетыурбанизированные территорииприродоподобная технологиябиоразнообразиедетритные (цепи разложения) пищевые цепиxylolysiswoodsaproxylic insectsxylotrophic basidiomycetes urbanized territoriesnature-like technologybiodiversitydetritus (decomposition chains) food chainsРабота выполнена в рамках государственного задания Министерства науки и высшего образования РФ (тема № FGGU-2025-0007)The work was carried out within the framework of the state assignment of the Ministry of Science and Higher Education of the Russian Federation (topic № FGGU-2025-0007)ReferencesБлаговещенская Е.Ю. Микологические исследования: Основы лабораторной техники. М.: ЛЕНАНД, 2021. 90 с.Blagoveshchenskaya E.Yu. Mikologicheskie issledovaniya: Osnovy laboratornoj tekhniki. Moscow: LENAND, 2021. 90 p. (In Russ.)Бондарцева М.А., Пармасто Э.Х. Определитель грибов СССР: Порядок афиллофоровые. Вып. 1. Л.: Наука, 1986. 192 с.Boddy L., Frankland J., Van West P. Ecology of Saprotrophic Basidiomycetes. Oxford: Elsevier, 2007. 386 p.Бондарцева М.А. Определитель грибов России. Порядок афиллофоровые; Вып. 2. СПб.: Наука, 1998. 391 с.Bondartseva M.A., Parmasto E.H. Opredelitel' gribov SSSR: Poryadok afilloforovye. Vyp. 1. Leningrad: Nauka, 1986. 192 p. (In Russ.)Давыдкина Т.А. Стереумовые грибы Советского Союза. Л.: Наука, 1980. 143 с.Bondartseva M.A. Opredelitel' gribov Rossii. Poryadok afilloforovye. Iss. 2. St. Petersburg: Nauka, 1998. 391 p. (In Russ.)Денисова Н.Б., Никитин В.Ф. Видовой состав и динамика развития жесткокрылых-ксилобионтов Ялтинского горно-лесного природного заповедника // Вестник КрасГАУ. Биологические науки. 2018. №1. С. 164–168.Davydkina T.A. Stereumovye griby Sovetskogo Soyuza. Leningrad: Nauka, 1980. 143 p. (In Russ.)Змитрович И.В. Определитель грибов России. Порядок афиллофоровые. Вып. 3. Семейства ателиевые и амилокортициевые. М.; СПб.: Тов-во науч. изданий КМК, 2008. 278 с.Denisova N.B., Nikitin V.F. Vidovoj sostav i dinamika razvitiya zhestkokrylyh-ksilobiontov Yaltinskogo gorno-lesnogo prirodnogo zapovednika. Vestnik KrasGAU. Biologicheskie nauki, 2018, no. 1, pp. 164–168. (In Russ.)Ивойлов А.В., Большаков С.Ю., Силаева Т.Б. Изучение видового разнообразия макромицетов. Саранск: Изд-во Мордов. Ун-та, 2017. 160 с.Edible and Medicinal Mushrooms Technology and Applications / ed. by D.C. Zied, A. Pardo-Giménez. Oxford: John Wiley & Sons Ltd, 2017. 586 p.Ижевский С.С., Никитский Н.Б., Волков О.Г., Долгин М.М. Иллюстрированный справочник жуков-ксилофагов – вредителей леса и лесоматериалов Российской Федерации. Тула: Гриф и К, 2005. 220 с.Ehnström B., Axelsson R. Insektsgnag I Bark Och Ved. Uppsala: SLU Artdatabanken, 2002. 512 p.Красуцкий Б.В. Краткий атлас некоторых ксилофильных грибов Челябинской области. Челябинск: Изд-во ЧелГУ, 2021. 192 с.Filipiak M. Nutrient Dynamics in Decomposing Dead Wood in the Context of Wood Eater Requirements: The Ecological Stoichiometry of Saproxylophagous Insects. Saproxylic Insects, 2018, pp. 429–469.Методы мониторинга вредителей и болезней леса / под ред. В. К. Тузова. М.: ВНИИЛМ, 2004. 200 с.Gupta V.K., Tuohy M.G. Laboratory Protocols in Fungal Biology Current Methods in Fungal Biology. London: Springer Science+Business Media, LLC, 2013. 606 p.Мозолевская Е.Г., Катаев О.А., Соколова Э.С. Методы лесопатологического обследования очагов стволовых вредителей и болезней леса. М.: Лесная промышленность, 1984. 152 с.Ivojlov A.V., Bol'shakov S.Yu., Silaeva T.B. Izuchenie vidovogo raznoobraziya makromicetov. Saransk: Izd-vo Mordov. Un-ta, 2017. 160 p. (In Russ.)Некляев С.Э., Ларина Г.Е., Серая Л.Г. Сукцессионные изменения афиллофоровых макромицетов на разных этапах ксилолиза хвойных пород // Аграрная наука. 2024. № 387(10). С. 145–153. DOI: 10.32634/0869-8155-2024-387-10-145-153.Izhevskij S.S., Nikitskij N.B., Volkov O.G., Dolgin M.M. Illyustrirovannyj spravochnik zhukov-ksilofagov – vreditelej lesa i lesomaterialov Rossijskoj Federacii. Tula: Grif i K, 2005. 220 p. (In Russ.)Никитский Н.Б., Ижевский С.С. Жуки-ксилофаги – вредители древесных растений России. М.: Лесная промышленность, 2005. 120 с.Jacobsen R.M., Kauserud H., Sverdrup-Thygeson A., Bjorbækmo M.M., Birkemoe T. Wood-inhabiting insects can function as targeted vectors for decomposer fungi. Fungal Ecol., 2017, vol. 29, pp. 76–84.Стороженко В.Г., Крутов В.И., Руоколайнен А.В., Коткова В.М., Бондарцева М.А. Атлас-определитель дереворазрушающих грибов Русской равнины. М.: КМК, 2014. 198 с.Krasuckij B.V. Kratkij atlas nekotoryh ksilofil'nyh gribov Chelyabinskoj oblasti. Chelyabinsk: Izd-vo ChelGU, 2021. 192 p. (In Russ.)Усольцев В.А., Цепордей И.С. Пространственно-временное замещение в экологии и проблема адаптации растений в условиях изменения климата // Леса России и хозяйство в них. 2021. № 4. С. 4–39. DOI: 10.51318/FRET.2021.55.23.001.Lunde L.F., Boddy L., Sverdrup-Thygeson A., Jacobsen R.M., Kauserud H., Birkemoe T. Beetles provide directed dispersal of viable spores of a keystone wood decay fungus. Fungal ecology, 2023, vol. 63(2023), pp. 101–232. DOI: 10.1016/j.funeco.2023.101232.Шорохова Е.В., Капица Е.А. Пути и скорость биогенного ксилолиза в таежных лесах // Теоретические и прикладные аспекты лесного почвоведения : сб. матер. VII Всерос. науч. конф. по лесному почвоведению с межд. уч. Петрозаводск, 2017. C. 118–121.Metody monitoringa vreditelej i boleznej lesa / pod red. V. K. Tuzova. Moscow: VNIILM, 2004. 200 p. (In Russ.)Boddy L., Frankland J., Van West P. Ecology of Saprotrophic Basidiomycetes. Oxford: Elsevier, 2007. 386 p.Mozolevskaya E.G., Kataev O.A., Sokolova E.S. Metody lesopatologicheskogo obsledovaniya ochagov stvolovyx vreditelej i boleznej lesa. Moscow: Lesnaya promyshlennost`, 1984. 152 p. (In Russ.)Edible and Medicinal Mushrooms Technology and Applications / ed. by D. C. Zied, A. Pardo-Giménez. Oxford: John Wiley & Sons Ltd, 2017. 586 p.Neklyaev S.E., Larina G.E., Seraya L.G. Sukcessionnye izmeneniya afilloforovyh makromicetov na raznyh etapah ksiloliza hvojnyh porod. Agrarnaya nauka, 2024, no. 387(10), pp. 145–153. DOI: 10.32634/0869-8155-2024-387-10-145-153. (In Russ.)Ehnström B., Axelsson R. Insektsgnag I Bark Och Ved. Uppsala: SLU Artdatabanken, 2002. 512 p.Niemelä T. Suomen käävät – The polypores of Finland. Norrlinia, 2016, vol. 31, pp. 1–430.Filipiak M. Nutrient Dynamics in Decomposing Dead Wood in the Context of Wood Eater Requirements: The Ecological Stoichiometry of Saproxylophagous Insects // Saproxylic Insects. 2018. P. 429–469.Nikitskij N.B., Izhevskij S.S. Zhuki-ksilofagi – vrediteli drevesnyh rastenij Rossii. Moscow: Lesnaya promyshlennost’, 2005. 120 p. (In Russ.)Gupta V.K., Tuohy M.G. Laboratory Protocols in Fungal Biology Current Methods in Fungal Biology. L.: Springer Science+Business Media, LLC, 2013. 606 p.Rodrigues A., Johnson A.J., Joseph R.A., Li Y., Keyhani N.O., Stanley E.L., Weiss B., Kaltenpoth M., Smith M.E., Hulcr J. Fungal symbiont community and absence of detectable mycangia in invasive Euplatypus ambrosia beetles. Symbiosis, 2023, vol. 90, pp. 305–319. DOI:10.1007/s13199-023-00938-4.Jacobsen R.M., Kauserud H., Sverdrup-Thygeson A., Bjorbækmo M.M., Birkemoe T. Wood-inhabiting insects can function as targeted vectors for decomposer fungi // Fungal Ecol. 2017. Vol. 29. P. 76–84.Ryvarden L., Gilbertson R.L. European polypores. Part 1. Abortiporus–Lindtneria. Synopsis Fungorum, 1993, vol. 6, pp. 1–387.Lunde L.F., Boddy L., Sverdrup-Thygeson A., Jacobsen R.M., Kauserud H., Birkemoe T. Beetles provide directed dispersal of viable spores of a keystone wood decay fungus // Fungal ecology. 2023. Vol. 63(2023). P. 101–232. DOI: 10.1016/j.funeco.2023.101232.Ryvarden L., Gilbertson R.L. European polypores. Part 2. Meripilus–Tyromyces. Synopsis Fungorum, 1994, vol. 7, pp. 388–743.Niemelä T. Suomen käävät – The polypores of Finland // Norrlinia. 2016. Vol. 31. P. 1–430.Seibold S., Müller J., Baldrian P., Cadotte M.W., Štursova M., Biedermann P.H., Krah F.–S. C. Bässler Fungi associated with beetles dispersing from dead wood – Let’s take the beetle bus! Fungal Ecol., 2019, vol. 39, pp. 100–108.Rodrigues A., Johnson A.J., Joseph R.A., Li Y., Keyhani N.O., Stanley E.L., Weiss B., Kaltenpoth M., Smith M.E., Hulcr J. Fungal symbiont community and absence of detectable mycangia in invasive Euplatypus ambrosia beetles // Symbiosis. 2023. Vol. 90. P. 305–319. DOI:10.1007/s13199-023-00938-4.Shorohova E.V., Kapitsa E.A. Puti i skorost' biogennogo ksiloliza v taezhnyh lesah. Teoreticheskie i prikladnye aspekty lesnogo pochvovedeniya : sb. mater. VII Vseros. nauch. konf. po lesnomu pochvovedeniyu s mezhd. uch. Petrozavodsk, 2017, pp. 118–121. (In Russ.)Ryvarden L., Gilbertson R.L. European polypores. Part 1. Abortiporus Lindtneria // Synopsis Fungorum. 1993. Vol. 6. P. 1–387.Skelton J., Jusino M.A., Carlson P.S., Smith K., Banik M.T., Lindner D.L., Palmer J.M., Hulcr J. Relationships among wood-boring beetles, fungi, and the decomposition of forest biomass. Molecular Ecology, 2019, vol. 28(22), pp. 1–16. DOI: 10.1111/mec.15263.Ryvarden L., Gilbertson R.L. European polypores. Part 2. Meripilus Tyromyces // Synopsis Fungorum. 1994. Vol. 7. P. 388–743.Stokland J.N., Siitonen J., Jonsson B. G. Biodiversity in dead wood. Cambridge, UK: University Printing House, 2012. 449 p. DOI: 10.1017/CBO9781139025843.Seibold S., Müller J., Baldrian P., Cadotte M.W., Štursova M., Biedermann P.H., Krah F. S. C. Bässler Fungi associated with beetles dispersing from dead wood – Let’s take the beetle bus! // Fungal Ecol. 2019. Vol. 39. P. 100–108.Storozhenko V.G., Krutov V.I., Ruokolajnen A.V., Kotkova V.M., Bondartseva M.A. Atlas-opredelitel' derevorazrushayushchih gribov Russkoj ravniny. Moscow: KMK, 2014. 198 p. (In Russ.)Skelton J., Jusino M.A., Carlson P.S., Smith K., Banik M.T., Lindner D.L., Palmer J.M., Hulcr J. Relationships among wood-boring beetles, fungi, and the decomposition of forest biomass // Molecular Ecology. 2019. Vol. 28(22). P. 1–16. DOI: 10.1111/mec.15263.Ulyshen M.D. Saproxylic Insects. Diversity, Ecology and Conservation. Hamburg: Springer, 2018. 904 p.Stokland J.N., Siitonen J., Jonsson B.G. Biodiversity in dead wood. Cambridge, UK: University Printing House, 2012. 449 p. DOI: 10.1017/CBO9781139025843.Usol’tsev V.A., Tsepordey I.S. Prostranstvenno-vremennoe zameshchenie v ekologii i problema adaptatsii rasteniy v usloviyakh izmeneniya klimata. Lesa Rossii i khozyaystvo v nikh, 2021, no. 4, pp. 4–39. DOI: 10.51318/FRET.2021.55.23.001. (In Russ.)Ulyshen M.D. Saproxylic Insects. Diversity, Ecology and Conservation. Hamburg: Springer, 2018. 904 p.Valacich J.S., George J.F. Modern Systems Analysis and Design. Harlow, UK: Pearson, 2021. 528 p.Valacich J.S., George J.F. Modern Systems Analysis and Design. Harlow, UK: Pearson, 2021. 528 p.Vega F.E., Blackwell M. Insect-Fungal Association. Ecology and Evolution. New York: Oxford University Press, 2005. 310 p.Vega F.E., Blackwell M. Insect-Fungal Association. Ecology and Evolution. N.-Y.: Oxford University Press, 2005. 310 p.Zabel R.A., Morrell J.J., Robinson S. Wood Microbiology. Decay and Its Prevention. London: ELSEVIER Academicals Press, 2020. 556 p.Zabel R.A., Morrell J.J., Robinson S. Wood Microbiology. Decay and Its Prevention. L.: ELSEVIER Academicals Press, 2020. 556 p.Zmitrovich I.V. Opredelitel' gribov Rossii. Poryadok afilloforovye. Vyp. 3. Semejstva atelievye i amilokorticievye. Moscow; St. Petersburg: Tov-vo nauch. izdanij KMK, 2008. 278 p. (In Russ.)

The authors declare that there are no conflicts of interest present.