Фитопатогенные микромицеты, ассоциированные с хвойными растениями на территории Средней Сибири

Микроорганизмы, ассоциированные с растениями, в том числе хвойными, играют важную роль в их жизни, формируя микробные сообщества филлосферы, ризопланы и ризосферы. Условно состав таких комплексов можно разделить на патогенную и сапротрофную части. Знание видового разнообразия патогенов, вызывающих заболевания сеянцев и саженцев хвойных, крайне необходимо специалистам сферы лесовозобновления для коррекции агротехнических мероприятий и контроля качества посадочного материала. Цель данных исследований – изучение видового разнообразия патогенных микромицетов хвойных на территории Средней Сибири как в искусственных, так и естественных насаждениях. Применялись классические и современные методы идентификации патогенов. Приводятся данные по видовому составу патогенных микромицетов хвойных за последние 10 лет. Многолетние исследования видового разнообразия микромицетов хвойных на территории Средней Сибири выявили представителей 36 родов, относящихся к различным систематическим группам: Lophodermium Chevall., Lophodermella Höhn., Cyclaneusma DiCosmo, Peredo et Minte, Gremmenia Korf., Hypodermella Tubeuf, Lirula Darker, Sarea Fr., Herpotrichia Fucke, Gremmeniella M. Morelet, Coleosporium Lév., Chrysomyxa Unger, Melampsora Castagne, Melampsorella J. Schröt., Pucciniastrum G.H. Otth., Cronartium Fr., Typhula (Pers.) Fr., Mucor Fresen., Rhizosphaera L. Mangin et Har, Pestalotia De Not., Sclerophoma Höhn. (телеоморфа – Sydowia Bres.), Stagonospora (Sacc.) Sacc. (=Hendersonia Berk.), Lecanosticta Syd., Dothistroma Hulbary, Fusarium Link, Meria Vuill. (телеоморфа – Rhabdocline Syd.), Phoma Sacc., Didymella Sacc., Alternaria Nees, Cladosporium Link, Rhizoctonia DC., Botrytis P. Micheli ex Pers., Septorioides Quaedvl., Verkley et Crous, Epicoccum Link, Trichothecium Link., Verticillium Nees., Cylindrocarpon Wollenw. (телеоморфа – Neonectria Wollenw). Идентифицированные патогены вызывают преждевременную гибель ассимиляционного аппарата, нарушают деятельность корневой и проводящих систем, снижают качество семян хвойных растений

1. Алимова Т.С., Сиволапов В.А., Карпеченко Н.А., Шишкина О. К., Пантелеев С.В., Ковалевич О. А. Применение методов молекулярной генетики для анализа наличия фитопатогенов в лесных насаждениях и питомниках Российской Федерации // Сибирский лесной журнал. 2014. № 4. С. 35–41.

2. Бажина Е.В., Аминев П.И. Особенности семеношения и морфологии побегов деревьев пихты сибирской, пораженных ржавчинным раком // Лесной журнал. 2007. № 3. С. 7–13.

3. Возняковская Ю.М. Микрофлора растений и урожай. Л.: Колос, 1969. 240 с.

4. Баранов О.Ю., Ярмолович В.А., Пантелеев С.В., Купреенко Д.Г. Молекулярно-генетическая диагностика грибных болезней в лесных питомниках // Лесное и охотничье хозяйство. 2012. № 6. С. 21–29.

5. Баранов О.Ю. Молекулярная фитопатология: современные подходы и основные направления диагностики болезней древесных растений // Сибирский лесной журнал. 2014. № 4. С. 42–45.

6. Жуков А.М., Жуков Е.А. Результаты мониторинга фитопатогенных грибов в лесах Дальнего Востока // Лесохозяйственная информация. 2008. № 6–7: 52–64.

7. Жуков А.М., Гниненко Ю.И., Жуков П.Д. Опасные малоизученные болезни хвойных пород в лесах России / Всерос. науч.-исслед. ин-т лесоводства и механизации лесн. хоз-ва. 2-е изд., испр. и доп. Пушкино: ВНИИЛМ, 2013. 128 с.

8. Иванчина Н.В., Гарипова С.Р. Влияние ростстимулирующих бактерий (PGPB) на продуктивность и устойчивость растений // Агрохимия. 2012. № 7. С. 87–95.

9. Инструментальные методы исследований почв и растений: [электрон. учеб.- метод. комплекс]. URL: http://www.kgau.ru/distance/2013/a2/011/00b_soderz.html (дата обращения: 27.12.2020).

10. Методы мониторинга вредителей и болезней леса // Болезни и вредители в лесах России: справочник. Т. III / под общ. ред. В.К. Тузова. М.: ВНИИЛМ, 2004. 200 с.

11. Михалева В.В., Смирнов Ф.Е., Турсунходжаев А.С., Захарова С.Н. Некоторые корневые бактерии как антагонисты фитопатогенных грибов // Агробиология. 1965. № 1. С. 32–36.

12. Падутов В.Е., Баранов О.Ю., Воропаев Е.В. Методы молекулярно-генетического анализа. Минск: Юнипол, 2007. 176 с.

13. Семенкова И.Г., Соколова Э.С. Лесная фитопатология: учебник для вузов. 2-е изд., перераб. и доп. М.: Экология, 1992. 345 с.

14. Сенашова В.А. Сопряженное развитие эпифитных микроорганизмов и фитопатогенных грибов на хвойных в различных экологических условиях Средней Сибири : автореф. дис. … канд. биол. наук. Красноярск, 2010. 22 с.

15. Сенашова В.А., Сафронова И.Е., Вилкова Т.Л. Фитопатогенные микромицеты сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L.) на территории Нижнего Приангарья // Известия Санкт-Петербургской лесотехнической академии. 2019. Вып. 228. С. 250–265. DOI: 10.21266/2079-4304.2019.228.250-265

16. Середич М.О. Обоснование мероприятий по защите посадочного материала сосны обыкновенной и ели европейской от фомоза в лесных питомниках Беларуси : автореф. дис. … канд. с.-х. наук. Прилуки, 2017. 24 с.

17. Скрипка О.В., Сурина Т.А. Коричневый пятнистый ожог – опасное заболевание хвои сосны // Карантин растений. Наука и практика. 2013. № 3(5). С. 4–9.

18. Соколова Э.С. Экология склерофомоза в культурах сосны // Лесоведение. 1984. № 4. С. 82–85.

19. Умаров М.М. Ассоциативная азотфиксация в биогеоценозах // Почвенные организмы как компоненты биогеоценоза. М.: Наука, 1984. С. 185–199.

20. Федоров Н.И. Лесная фитопатология: учебник для студ. спец. «Лесное хозяйство». Изд. 3-е, перераб. и доп. Минск: БГТУ, 2004. 438 с.

21. Шилкина Е.А., Шеллер М.А., Ибе А.А., Сухих Т.В. Молекулярно-генетические методы в фитопатологическом мониторинге объектов лесного фонда Красноярского края // X Чтения памяти О.А. Катаева: матер. Междунар. конф. Т. 2. Фитопатогенные грибы, вопросы патологии и защиты леса / под ред. Д.Л. Мусолина, А.В. Селиховкина. СПб., 2018а. С. 43–44.

22. Шилкина Е.А., Шеллер М.А., Раздорожная Т.Ю., Ибе А.А. Результаты ДНК-диагностики фитопатогенных грибов лесных питомников Красноярского края и республики Хакасия // Сибирский лесной журнал. 2018б. № 2. С. 15–27.

23. Щедрова В.И. Возбудитель язвенного рака сосны обыкновенной // Ботанический журнал. 1964. Т. 49. № 9. С. 1314–1317.

24. Щедрова В.И. Язвенный рак – болезнь соснового подроста предварительного возобновления // Изв. вузов. Лесной журнал. 1965. № 3. С. 40–45.

25. Щедрова В.И. Болезни хвойных пород: лекции для студентов спец. 1512. Л.: ЛТА, 1979. 36 с.

26. Aveskamp M.M., De Gruyter J., Crous P.W. Biology and recent developments in the systematics of Phoma, a complex genus of major quarantine significance // Fungal Diversity. 2008. Vol. 31. P. 1–18.

27. Barnet H.L., Hunter B.B. Illustrated Genera of Imperfect Fungi, forth ed. Minnesota: American Phytopathological Society, 1999. 218 p.

28. Butin H. Morphologische und taxonomische Untersuchungen an Naemacyclus niveus (Pers. ex Fr.) Fuck. ex Sacc. und verwandten Arten // Eur. J. Fort. Path. 1973. Vol. 3. P. 146–163.

29. Cleary M., Laas M., Oskay F., Drenkhan R. First report of Lecanosticta acicola on non-native Pinus mugo in Southern Sweden. Forest Pathology. 2019; 49: e12507. DOI: 10.1111/efp.12507

30. Golzar H., Lanoiselet V., Wang C., Tan Y.P., Shivas R.G. First report of Phoma multirostrata in Australia // Australasian Plant Disease Notes. 2015. Vol. 10, iss. 1. Article: 8. 2 p.

31. Kuz’mina N.A., Senashova V.A., Kuz’min S.R. Distribution of Lophodermium needle cast agents in Scots pine stands in Middle Siberia // Contemporary Problems of Ecology, 2015. Vol. 8, no. 7. P. 909–915.

32. Ndobe E.N. Fungi associated with roots of healthy-looking Scots pines and Norway spruce seedlings grown in nine Swedish forest nurseries. Degree project – 30 credits – Advanced level. Dpt. For. Mycol. Plant Pathol., Swedish Univ. Agr. Sci., Uppsala, Sweden, 2012. P. 8.

33. Sinclair W.A., Lyon H.H. Diseases of trees and shrubs. N. Y.: Cornell University Press, Sage House, 2005. 660 p.

34. Tchebakova N.M., Kuzmina N.A., Parfenova E.I., Senashova V.A., Kuzmin S.R. Assessment of climatic limits of needle cast-affected area under climate change in Central Siberia. Contemporary Problems of Ecology. 2016. Vol. 9. No. 6. P. 721–729.

35. The National Center for Biotechnology Information – NCBI, 2017.

36. Van der Nest A., Wingfield M.J., Barnes I., Janoušek J. Lecanosticta acicola: a growing threat to expanding global pine forests and plantations // Molecular Plant Pathology. 2019. Vol. 20, no. 10. Р. 1327–1364.

37. White T.J., Bruns T., Lee S., Taylor J. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics // M.A. Innis, D.H. Gelfand, J.J. Sninsky, T.J. White (Eds.). PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications. San Diego: Acad. Press, 1990. P. 315–322.

38. Yadav A.N., Verma P., Singh B., Chauahan V.S., Suman A., Saxena A.K. Plant growth promoting bacteria: biodiversity and multifunctional attributes for sustainable agriculture // Adv. Biotech & Micro. 2017. Vol. 5, iss. P. 555–671. DOI: 10.19080/AIBM.2017.05.555671

39. Zimowska B. Characteristics and occurrence of Phoma spp. on herbs from the family Lamiaceae // Acta Scientiarum Polonorum Hortorum Cultus. 2011. Iss. 10, no. 2. P. 213–224.